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dc.contributor.advisorSánchez Leal, Ligia Consuelo
dc.contributor.authorCastañeda Neuta, Debbye Carolina
dc.contributor.authorContreras Garzon, Angelica Maria
dc.contributor.authorAguilar Lopez, Ingrid Daniela
dc.date.accessioned2021-11-21T02:34:01Z
dc.date.available2021-11-21T02:34:01Z
dc.date.issued2019
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/3692
dc.description.abstractEl glifosato es un herbicida de amplio espectro utilizado para la erradicación de cultivos ilícitos y para el control de malezas en cultivos lícitos de importancia agrícola. En Colombia, en los últimos años, su uso ha tenido un gran auge, debido al incremento de cultivos de coca, marihuana y amapola, ocasionando variaciones en la microbiota presente en el suelo, de acuerdo con investigaciones previas. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto del uso de glifosato sobre la diversidad de poblaciones microbianas presentes en el suelo de la zona de amortiguación del parque Nacional Natural Paramillo, Córdoba, Colombia. La metodología incluyó la recolección de muestras de suelo de dos zonas diferentes del parque: suelo impactado con glifosato y suelo sin contacto previo con glifosato, para esto se tuvo en cuenta el formato de concepto técnico sobre daño ambiental emitido por el Parque Nacional Natural Paramillo. Se realizó extracción de ADN mediante el kit comercial ZymoBIOMICSTM DNA Miniprep, el cual fue analizado mediante la plataforma de secuenciación de segunda generación Illumina Mi Seq, a partir de las región 16S del rRNA de procariotas. Para el suelo con glifosato se obtuvieron 55414 secuencias crudas y 219 OTU y para el suelo sin glifosato se obtuvieron 56656 secuencias crudas y 405 OTUs, respecto a los parámetros taxonómicos predominantes se encontró: Filo Proteobacterias (30.8% y 34.9%), Clase Alphaproteobacteria (18.27% y 24.56%), Orden Rhizobiales (12.2% y 15.2%), Familia Xanthomonadaceae (2.9% y 0.0%), Género Acidothermus (4.2% y 4.5%) y finalmente Especie defluvii-equi-niigatensis (2.0% y 0.9%).spa
dc.description.abstractGlyphosate is a broad-spectrum herbicide used for the eradication of illicit crops and for the control of weeds in licit crops of agricultural importance. In Colombia, in recent years, its use has had a great boom, due to the increase in coca, marihuana and poppy crops, causing variations in the microbiota present in the soil, according to previous research. The objective of this work was to evaluate the effect of the use of glyphosate on the diversity of microbial populations present in the soil of the buffer zone of the Parque Nacional Natural Paramillo, Córdoba, Colombia. The methodology included the collection of soil samples from two different areas of the park: soil impacted with glyphosate and soil without previous contact with glyphosate, for this the format of the technical concept on environmental damage emitted by the Parque Nacional Natural Paramillo was taken into account. DNA extraction was carried out using the commercial kit ZymoBIOMICS TM DNA Miniprep, which was analyzed using the second generation sequencing platform Illumina Mi Seq, from the 16S region of prokaryotic rRNA. For the soil with glyphosate 55414 crude sequences and 219 OTU were obtained and for the soil without glyphosate 56656 crude sequences and 405 OTUs were obtained, with respect to the predominant taxonomic parameters found: Phylum Proteobacteria (30.8% and 34.9%), Class Alphaproteobacteria ( 18.27% and 24.56%), Order Rhizobiales (12.2% and 15.2%), Family Xanthomonadaceae (2.9% and 0.0%), Genus Acidothermus (4.2% and 4.5%) and finally Species defluvii-equi-niigatensis (2.0% and 0.9% ).eng
dc.description.tableofcontentsINDICE DE FIGURAS 11 INDICE DE TABLAS 12 RESUMEN 13 INTRODUCCIÓN 16 OBJETIVOS 19 OBJETIVO GENERAL 19 OBJETIVOS ESPECIFICOS 19 1. ANTECEDENTES 20 2. MARCO REFERENCIAL 25 2.1 Municipio de Tierralta 25 2.1.1 Parque Nacional Natural Paramillo 26 2.1.2 Vereda Tuis Tuis, finca Tuti Fruti 27 2.1.3 Zona de amortiguación Parque Nacional Natural Paramillo 28 2.2 Generalidades de Glifosato 29 2.2.1 Mecanismo de acción 31 2.2.2 Toxicidad 32 2.3 Historia en Colombia 33 2.4 Generalidades del suelo 35 2.4.1 Propiedades físicas del suelo 36 2.4.2 Propiedades químicas del suelo 36 2.4.3 Microorganismos del suelo 37 2.4.3.1 Bacterias 38 - Bacterias promotoras del crecimiento vegetal (PGPB) 38 2.4.3.2 Actinomicetos 39 2.4.4 Grupos funcionales presentes en el suelo 39 2.4.4.1 Microorganismos fijadores de nitrógeno 39 2.4.4.2 Microorganismos celulolíticos 40 2.4.4.3 Microorganismos amilolíticos 41 2.4.4.4 Microorganismos proteolíticos 41 2.4.4.5 Microorganismos solubilizadores de fosfato 42 2.4.5 Vía del shikimato 42 2.5 Metagenómica como alternativa para conocer el microbioma de un ambiente 44 2.5.1 Pasos de la metagenómica 45 2.5.1.1 Extracción de ADN metagenómico 45 2.5.1.2 PCR 46 2.5.1.3 Electroforesis 47 2.5.1.4 Secuenciación de próxima generación 48 - Illumina 48 - Ilumina Miseq 49 2.6 Identificación Procariota por ARNr 16S 49 2.7 Bioinformática 51 2.7.1 BLAST 51 2.7.2 QIIME (Quantitative Insights Into Microbial Ecology) 52 2.7.3 DADA2 52 3. DISEÑO METODOLÓGICO 54 3.1 Tipo de investigación 54 3.2 Universo, población, muestra 54 3.2.1 Universo 54 3.2.2 Población 54 3.2.3 Muestra 54 3.3 Variables, indicadores 54 3.3.1 Variable independiente 54 3.3.2 Variable dependiente 55 3.3.3. Indicadores 55 3.4 Hipótesis 56 3.5 Técnicas y procedimientos 56 3.5.1 Ubicación de la zona de muestreo 56 3.5.2 Recolección de muestras 57 3.5.3 Conservación de muestras 59 3.5.4 Análisis físico químico 59 3.5.5 Extracción de DNA genómico 60 3.5.6 PCR 61 3.5.7 Electroforesis 61 3.5.8 Cuantificación 62 3.5.9 Secuenciación 62 3.5.9.1 Preparación de la biblioteca 16S 62 3.5.9.2 Secuenciación 63 3.5.10 Análisis bioinformático 63 4 RESULTADOS 64 4.1 PCR y electroforesis 64 4.2 Análisis físico químico 65 4.3 Análisis metagenómico 67 4.3.1 Secuencias obtenidas 68 4.3.2 Análisis metagenómico del gen ARNr 16S 68 5 DISCUSIÓN 75 6 CONCLUSIONES 100 7. RECOMENDACIONES 101 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 102 ANEXOS 117spa
dc.format.extent135p.spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Colegio Mayor de Cundinamarcaspa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/spa
dc.titleEvaluación del uso del glifosato sobre la microbiota del suelo, en la zona de amortiguación del parque nacional natural paramillo, en Córdoba, Colombia.spa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
dc.coverage.regionCórdoba
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínicospa
dc.identifier.barcode60041
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias de la Saludspa
dc.publisher.placeBogotá DCspa
dc.publisher.programBacteriología y Laboratorio Clínicospa
dc.relation.referencesSalazar Lopez NJ, Aldana Madrid ML. Herbicida Glifosato: Usos, Toxicidad Y Regulacion. Biotecnia [Internet]. 2011;13(2):23-28 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://www.biotecnia.uson.mx/revistas/articulos/16-BIO-11-DPA-04.pdfspa
dc.relation.referencesCuervo Andrade JL. INTERACCIÓN DEL GLIFOSATO (ROUNDUP®) CON LA BIOTA MICROBIANA DEL SUELO Y COMPORTAMIENTO DE ESTE HERBICIDA EN TRES SUELOS DEL TOLIMA-COLOMBIA, BAJO CONDICIONES CONTROLADAS. [Tesis Doctoral].Bogota: Universidad Nacional de Colombia; 2007.spa
dc.relation.referencesAcuña O, Wagner P, Serrano E, Pocasangre L, Rosales F, Delgado E, et al. LA IMPORTANCIA DE LOS MICROORGANISMOS EN LA CALIDAD Y SALUD DE SUELOS [Internet]. [Consultado 12 Ene 2019]; Disponible en: http://www.musalit.org/viewPdf.php?file=IN060651_spa.pdf&id=10470spa
dc.relation.referencesUnites States Environmental Protection Agency. Glyphosate [Internet]. Estados Unidos. [Consultado 24 May 2019]. Disponible en: https://www.epa.gov/ingredients-used-pesticide-products/glyphosatespa
dc.relation.referencesUnites States Environmental Protection Agency. Glyphosate; tolerances for residues. [Internet]. [Consultado 23 May 2019]; 2010. Disponible en: https://www.govinfo.gov/content/pkg/CFR-2010-title40-vol23/pdf/CFR- 2010-title40-vol23-sec180-364.pdfspa
dc.relation.referencesBórtoli P V., Verdenelli RA, Conforto C, Vargas Gil S, Meriles JM. Efectos del herbicida glifosato sobre la estructura y el funcionamiento de comunidades microbianas de dos suelos de plantaciones de olivo. Ecol Austral. 2012;22(1):33-42.spa
dc.relation.referencesMalty JDS, Siqueira JO, De Souza Moreira FM. Effects of glyphosate on soybean symbiotic microorganisms, in culture media and in greenhouse. Pesqui Agropecu Bras [Internet]. 2006;41(2):285-291 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://www.scielo.br/pdf/pab/v41n2/a13v41n2.pdfspa
dc.relation.referencesMartínez Nieto P, Bernal Castillo J, Fonseca Agudelo E, Bernier Lopez S. TOLERANCIA Y DEGRADACION DEL GLIFOSATO POR BACTERIAS AISLADAS DE SUELOS CON APLICACIONES FRECUENTES DE ROUNDUP SL®. Rev Pilquen [Internet]. 2012;14(12):1-7 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://docplayer.es/13188573-Tolerancia-y- degradacion-del-glifosato-por-bacterias-aisladas-de-suelos-con- aplicaciones-frecuentes-de-roundup-sl.htmlspa
dc.relation.referencesChaves Bedoya G, Ortíz Moreno ML, Ortiz Rojas LY. Efecto de la aplicación de agroquímicos en un cultivo de arroz sobre los microorganismos del suelo. Acta Agron [Internet]. 2013;62(1):66-72 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=169929770011spa
dc.relation.referencesAllegrini M, Zabaloy MC, Gómez E del V. Ecotoxicological assessment of soil microbial community tolerance to glyphosate. Sci Total Environ [Internet]. 2015;533:60-68 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.scitotenv.2015.06.096spa
dc.relation.referencesNewman MM, Hoilett N, Lorenz N, Dick RP, Liles MR, Ramsier C, et al. Glyphosate effects on soil rhizosphere-associated bacterial 103 communities. Sci Total Environ [Internet]. 2016;543:155-160 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.scitotenv.2015.11.008spa
dc.relation.referencesNguyen DB, Rose MT, Rose TJ, Morris SG, van Zwieten L. Impact of glyphosate on soil microbial biomass and respiration: A meta-analysis. Soil Biol Biochem [Internet]. 2016;92:50-57 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.soilbio.2015.09.014spa
dc.relation.referencesImparato V, Santos SS, Johansen A, Geisen S, Winding A. Stimulation of bacteria and protists in rhizosphere of glyphosate-treated barley. Appl Soil Ecol [Internet]. 2016;98:47-55 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.apsoil.2015.09.007spa
dc.relation.referencesNewman MM, Lorenz N, Hoilett N, Lee NR, Dick RP, Liles MR, et al. Changes in rhizosphere bacterial gene expression following glyphosate treatment. Sci Total Environ [Internet]. 2016;553:32-41 [Consultado 12 ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.scitotenv.2016.02.078spa
dc.relation.referencesZabaloy MC, Allegrini M, Tebbe DA, Schuster K, Gomez E del V. Nitrifying bacteria and archaea withstanding glyphosate in fertilized soil microcosms. Appl Soil Ecol [Internet]. 2017;117-118:88-95 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.apsoil.2017.04.012spa
dc.relation.referencesAlcaldía Municipal de Tierralta-Córdoba. Plan de desarrollo de Tierralta “Por Ustedes” 2012 – 2015 [Internet]. p. [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://tierralta- cordoba.gov.co/Transparencia/PlaneacionGestionyControl/Plan de Desarrollo de Tierralta.pdfspa
dc.relation.referencesAlcaldía Municipal de Tierralta-Córdoba. Plan de Desarrollo Municipal 2016-2019 [Internet]. p. [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://www.tierralta- cordoba.gov.co/Transparencia/PlaneacionGestionyControl/Plan de Desarrollo 2016-2019.pdfspa
dc.relation.referencesGoogle maps. Mapa del municipio Tierralta, Córdoba. Colombia [Internet]. 2019 [Consultado 17 May 2019]. Disponible en: https://www.google.com/maps/place/Tierralta,+Córdoba/@8.1716126,- 76.0798232,5905m/data=!3m1!1e3!4m5!3m4!1s0x8e5af494d417640d:0x d65a3a8e090ab9ae!8m2!3d8.171571!4d-76.062313spa
dc.relation.referencesEstupiñán González AC, Jimenez Escobar N, Avella Muñoz A. Composicion florística y estructural de dos sectores de bosque primario en la franja tropical del Parque Nacional Natural Paramillo (Córdoba, Colombia). En: Perez Torres J, Vidal Pastrana C, Racero Casarrubia J, editores. Biodiversidad asociada a los sectores Manso y Tigre del Parque Nacional Natural Paramillo Bogota. p. 245.spa
dc.relation.referencesGoogle maps. Mapa del Parque Nacional Natural Paramillo, Córdoba, Colombia [Internet]. 2019 [Consultado 17 May 2019]. Disponible en: https://www.google.com/maps/place/Parque+Nacional+Natural+Paramillo /@7.5476744,- 77.2468198,379503m/data=!3m1!1e3!4m5!3m4!1s0x8e454a9af690aa31: 0x87f727372794a238!8m2!3d7.5473875!4d-76.1260344spa
dc.relation.referencesGoogle maps. Mapa de la Vereda Tuis Tuis [Internet]. 2019 104 [Consultado 17 May 2019]. Disponible en: https://www.google.com/maps?q=VEREDA+TUIS+TUIS+TIERRALTA&rlz =1C1CHZL_esCO748CO749&um=1&ie=UTF- 8&sa=X&ved=0ahUKEwiN8eiRrdHiAhVhu1kKHZH3DJwQ_AUIESgCspa
dc.relation.referencesSubgerencia Cultural del Banco de la República. Área de amortiguación. [Internet]. 2015 [citado 4 de junio de 2019]. Disponible en: http://enciclopedia.banrepcultural.org/index.php/Área_de_amortiguaciónspa
dc.relation.referencesMartínez, A. J., Arboleda, G., Montalvo, E., Puche, M., Naranjo, L. E., Rodríguez, H., & Giraldo A. Plan de Manejo Parque Nacional Natural de Paramillo. [Internet]. 2005. Disponible en: http://www.parquesnacionales.gov.co/portal/wp- content/uploads/2013/12/Paramillo.pdfspa
dc.relation.referencesCampuzano Cortina C, Feijoó Fonnegra LM, Manzur Pineda K, Palacio Muñoz M, Rendón Fonnegra J, Zapata Díaz JP. Efectos de la intoxicación por glifosato en la población agrícola: revisión de tema. Rev CES Salud Pública [Internet]. 2017;8(1):121-133 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://revistas.ces.edu.co/index.php/ces_salud_publica/article/view/4427 %0Ahttp://revistas.ces.edu.co/index.php/ces_salud_publica/article/viewFil e/4427/2824spa
dc.relation.referencesMarie Lyons K. Guerra química en Colombia, ecologías de la evidencia y senti-actuar prácticas de justicia [Internet]. p. [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://revistas.javeriana.edu.co/index.php/univhumanistica/article/view/18 750spa
dc.relation.referencesBolaños Muñoz E La “Suspensión” del glifosato en la erradicación de cultivos ilícitos en Colombia: ¿Una solución humanitaria o un cambio para que todo siga igual?. [Trabajo de grado] Bogota. Universidad Católica de Colombia; 2016.spa
dc.relation.referencesOstera JM, Malanga G, Puntarulo S, Para A. Actualización Sobre Aspectos Oxidativos Del Efecto Del Glifosato En Sistemas Biológicos an Update on the Effects of Glyphosate on the Oxidative State in Biological Systems. Biotecnia [Internet]. 2016;18(2):3-10 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://biotecnia.ojs.escire.netspa
dc.relation.referencesNaranjo A, Bravo E, Naranjo A. América Latina fumigada y crisis de las commodities . El caso del glifosato de Monsanto. 2016;11(21):229- 250 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://revistas.unal.edu.co/index.php/cienciapol/article/view/60295spa
dc.relation.referencesVan Bruggen AHC, He MM, Shin K, Mai V, Jeong KC, Finckh MR, et al. Environmental and health effects of the herbicide glyphosate. Sci Total Environ [Internet]. 2018;616-617:255-268 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0048969717330279?vi a%3Dihubspa
dc.relation.referencesSuperior Court of the State of California. County of San Francisco. Dewayne Johnson (plaintiff) vs. Monsanto company (defendant). [Internet]. 2018. Disponible en: https://usrtk.org/wp- content/uploads/2018/10/Johnson-vs.-Monsanto-10.22.18-Order-re- JNOV-and-New-Trial.pdfspa
dc.relation.referencesAndreotti G, Koutros S, Hofmann JN, Sandler DP, Lubin JH, Lynch 105 CF, et al. Glyphosate Use and Cancer Incidence in the Agricultural Health Study. J Natl Cancer Inst [Internet]. 2018;110(5):1-8. Disponible en: https://www.baumhedlundlaw.com/pdf/monsanto-documents/johnson- trial/PTX-0669-Gly-Use-Cancer-Incidence-AHS.pdfspa
dc.relation.referencesUnites States Environmental Protection Agency. EPA Takes Next Step in Review Process for Herbicide Glyphosate, Reaffirms No Risk to Public Health [Internet]. [Consultado 17 May 2019]. Disponible en: https://www.epa.gov/newsreleases/epa-takes-next-step-review-process- herbicide-glyphosate-reaffirms-no-risk-public-healthspa
dc.relation.referencesAgence France Presse. Monsanto ordered to pay $2 bn in latest Roundup blow [Internet]. [Consultado 17 May 2019]. Disponible en: https://www.afp.com/en/news/15/monsanto-ordered-pay-2-bn-latest- roundup-blow-doc-1gf2rn2spa
dc.relation.referencesOrozco Caña C. Ordenamiento territorial y medio ambiente: incidencia de las normas jurídicas Valle del Cauca, 1990 - 1998. 2003. 532 p.spa
dc.relation.referencesCamacho A, Mejía D. The health consequences of aerial spraying illicit crops: The case of Colombia. J Health Econ [Internet]. 2017;54:147- 60. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.jhealeco.2017.04.005spa
dc.relation.referencesAndrade Cadena N. COLOMBIAN FUMIGATION OF HERBICIDES AND INTERNATIONAL HUMANITARIAN LAW. Rev Derecho [Internet]. 2017;6:173-184 [Comsultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://www.iushumani.org/index.php/iushumani/article/view/123spa
dc.relation.referencesColombia.Ministerio del Medio Ambiente. Plan Manejo Ambiental, Resolución N. 1065 26 de noviembre de 2001 " Por medio de la cual se impone un plan de manejo y se toman otras determinaciones ". Bogota. Ministerio de Ambiente (26 nov 2001);spa
dc.relation.referencesColombia. Autoridad Nacional de Licencias Ambientales - ANLA. Resolucion N° 01524 “Por la cual se modifica la resolución 1065 del 26 de noviembre de 2001 modificada por las resoluciones 99 del 31 de. enero de 2003, 1054 del 30 de septiembre de 2003, 672 del 4 de julio de 2013, y 708 del 11 de julio de 2016 y se toman otras determinaciones” Bogota: ANLA (12 dic 2016);spa
dc.relation.referencesFranco DR. Intervención del Centro de Estudios de Derecho, Justicia y Sociedad –Dejusticia– en audiencia pública citada mediante auto del 23 de enero de 2019, en seguimiento de la Sentencia T 236 de 2017. [Internet]. 2019. Disponible en: https://cdn.dejusticia.org/wp- content/uploads/2019/03/Intervención-Escrita-Audiencia-Glifosato.pdfspa
dc.relation.referencesOrtiz Silla R. Síntesis de la evolución del conocimiento en Edafología. Rev Eubacteria [Internet]. 2015;34:51-64 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=5370380spa
dc.relation.referencesRucks L, Garcia F, Ponce de Leon J, Hill M. Propiedades Físicas del Suelo [Internet]. 2004. Disponible en: http://bibliofagro.pbworks.com/f/propiedades+fisicas+del+suelo.pdfspa
dc.relation.referencesDairy Australia. Chapter 4 - Soil Properties [Internet]. Disponible en: http://www.fao.org/docrep/field/003/AC172E/AC172E04.htmspa
dc.relation.referencesGardi C, Angelini M, Barceló S, Comerma J, Cruz Gaistardo C, Encina Rojas A, et al. ATLAS DE SUELOS DE AMÉRICA LATINA Y EL 106 CARIBE [Internet]. 2014. p. 176. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/262731098_Atlas_de_suelos_d e_America_Latina_y_el_Caribespa
dc.relation.referencesDelgado A, Gomez JA. The Soil. Physical, Chemical and Biological Properties [Internet]. 2016. p. 15-27. Disponible en: http://link.springer.com/10.1007/978-3-319-46116-8spa
dc.relation.referencesOrganización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura. Propiedades Físicas del Suelo [Internet]. Disponible en: http://www.fao.org/soils-portal/soil-survey/propiedades-del- suelo/propiedades-fisicas/es/spa
dc.relation.referencesAsociacion Internacional de la Industria de los Fertilizantes. Los fertilizantes y su uso [Internet]. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 1993. p. 83. Disponible en: http://www.fao.org/3/a- x4781s.pdfspa
dc.relation.referencesMcCauley A, Jones C, Jacobsen J. Basic Soil Properies: Soil and Water management [Internet]. Vol. 4481. 2005. p. 1-12. Disponible en: http://landresources.montana.edu/swm/documents/Final_proof_SW1.pdfspa
dc.relation.referencesZapata JAR. Microorganismos del suelo. En: Técnicas de muestreo para manejadores de recursos naturales. Mexico; 2004. p. 183- 303.spa
dc.relation.referencesLoredo OC, López RL, Espinoza VD. Bacterias promotoras del crecimiento vegetal asociadas con gramíneas: una revisión. Plant Growth-Promoting Bacteria in Association with Graminaceous Species: A Review. TERRA Latinoam. 2004;22(2):225-39.spa
dc.relation.referencesQuiñones-aguilar EE, Evangelista-martínez Z, Rincón-enríquez G. Los actinomicetos y su aplicación biotecnológica. Elementos [Internet]. 2016;101:59-64. Disponible en: https://elementos.buap.mx/num101/pdf/59.pdfspa
dc.relation.referencesFernández-Pascual MN de M y MR de F. Fijacion Biológica de nitrógeno: Factores limitantes. Cienc y Medio Ambient [Internet]. 2002;1- 8. Disponible en: http://digital.csic.es/bitstream/10261/128283/1/Fijación Biológica391(MC F Pascual).pdfspa
dc.relation.referencesAlcivar Vega MD, Vera Vargas VE. Escuela superior politécnica agropecuaria tema : aislamiento de bacterias celulolíticas a diferentes profundidades en plantación de teca ( Tectona grandis ) y pechiche ( Vitex gigantea ). [Tesis previa a la obtención del título de ingeniero ambiental]. Calceta: Escuela Superior Politecnica Agropecuaria de Manabi «Manuel Felix Lopez»; 2013.spa
dc.relation.referencesBeltrán Pineda Mayra Eleonora , Rocha Gil Zulma Edelmira BFAA y PMLA. MICROORGANISMOS FUNCIONALES EN SUELOS CON Y SIN REVEGETALIZACIÓN EN EL MUNICIPIO DE VILLA DE LEYVA, BOYACÁ. Colomb For [Internet]. 2017;2(2):158-70. Disponible en: https://www.redalyc.org/pdf/4239/423951477005.pdfspa
dc.relation.referencesSohail M, Ahmad A, Shahzad S, Khan SA. A survey of amylolytic bacteria and fungi from native environmental samples. Pakistan J Bot. 2005;37(1):155-61.spa
dc.relation.referencesGonzales JMP. ESTUDIO DE GRUPOS FUNCIONALES DE MICROORGANISMOS EDAFICOS EN LA RIZOSFERA DE ALNUS GLUTINOSA (L.) GAERTN. [Internet]. Universidad Complutense Madrid; 1991. Disponible en: https://eprints.ucm.es/3428/1/T17025.pdfspa
dc.relation.referencesUseche YM, Valencia H, Perez H. Caracterización de bacterias y hongos solubilizadores de fosfato bajo tres usos de suelo en el Sur del Trapecio Amazónico [Internet]. Universidad Nacional de Colombia; 2004. Disponible en: https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/27408/27668spa
dc.relation.referencesTzin V, Galili G. The Biosynthetic Pathways for Shikimate and Aromatic Amino Acids in Arabidopsis thaliana. Arab B [Internet]. 2010;8:1- 18. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3244902/pdf/tab.0132.pdfspa
dc.relation.referencesHerrera MD, Reveles-Torres LR, Velásquez-Valle R. Cambios en el metabolismo de los fenilpropanoides en plantas de chile tipo mirasol infectadas por fitoplasma. [Internet]. 2016. Disponible en: http://www.zacatecas.inifap.gob.mx/publicaciones/Fenilpropanoides.pdfspa
dc.relation.referencesVillamil C, Del Portillo P, Mongui A. Clonación , expresión y caracterización de una nueva esterasa derivada de metagenomas de suelos agrícolas colombianos Cloning , expression and characterization of a novel esterase derived from colombian agricultural soils metagenomes. Rev Colomb Biotecnol [Internet]. 2016;18(2):48-55 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=77649147006spa
dc.relation.referencesEscalante Lozada A, Gosset Lagarda, Guillermo Martínez Jiménez, Alfredo Bolívar Zapata F. Diversidad Bacteriana Del Suelo: Métodos De Estudio No Dependientes Del Cultivo Microbiano E Implicaciones Biotecnológicas. Agrociencia [Internet]. 2004;38(6):583-592 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=30238602spa
dc.relation.referencesGoel R, Chandra Suyal D, Narayan, Dash B, Soni R. Soil Metagenomics: A Tool for Sustainable Agriculture. En: Chandra Kalia V, Shouche Y, Purohit HJ, Rahi P, editores. Mining of Microbial Wealth and MetaGenomics. 2017. p. 461.spa
dc.relation.referencesRascovan N. Abriendo la caja negra de los microbiomas ambientales argentinos. Caracterizaciones funcionales y ecológicas en lagunas de altura andinas y suelos de la pampa húmeda con secuenciación de alto rendimiento. [Tesis Doctoral]. Buenos Aires: Universidad de Buenos Aires; 2013.spa
dc.relation.referencesNavas M, Pérez J, Godoy Prieto M, Rodríguez Iglesias A, Masaguer A, Moliner A. Diversidad bacteriana en suelos de zonas contaminadas y no contaminadas de una mina de cobre [Internet]. 2018. p. 627-629 [Consultado 12 Ene 2019]. Disponible en: http://oa.upm.es/51373/spa
dc.relation.referencesSuárez Silva YA. Analisis de la funcionalidad y diversidad microbiana en suelos dedicados al cultivo de para criolla ( Solanum phureja ) mediante una aproximación metagenomica. [Trabajo de grado para optar al titulo de Magister en Microbiologia].Bogota: Universidad Nacional de Colombia; 2010.spa
dc.relation.referencesOspina MC. Caracterización preliminar de una enzima con actividad lipolítica obtenida de una librería metagenómica. [Tesis de pregrado en Microbiologia].Bogota: Universidad de los Andes; 2013.spa
dc.relation.referencesHernandez De Lira I omar, Huber D, Escareño Luevanos MP, Hernandez Teran F, Sáenz Mata J, Balagurusamy N. Metagenómica: 108 Concepto y Aplicaciones en el Mundo Microbiano. En: Cueto Wong MC, De la Fuente Salcido NM, Luévanos Escareño MP, editores. Fronteras en Microbiología Aplicada. 1.a ed. 2015. p. 154-70.spa
dc.relation.referencesZapata Erazo GG. DISEÑO Y OPTIMIZACIÓN DE UN SISTEMA DE AMPLIO ESPECTRO BASADO EN LA AMPLIFICACIÓN DE UN FRAGMENTO DEL GEN ADN RIBOSOMAL 16S MEDIANTE REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA EN TIEMPO REAL PARA SU APLICACIÓN COMO MÉTODO DE DIAGNÓSTICO E IDENTIFICACIÓN MOLECULA. [Tesis para obtener el titulo de Ingeniera en Biotecnologia]. Sangolqui: Escuela Politecnica Del Ejercito; 2011.spa
dc.relation.referencesSurzycki S. Basic Techniques in Molecular Biology [Internet]. 1.a ed. Springer-Verlag Berlin Heidelberg; 2000. [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://www.springer.com/la/book/9783540666783#reviewsspa
dc.relation.referencesGiler Mendoza JE. Caracterización de las comunidades microbianas en suelos cultivados con banano bajo sistemas de manejo orgánico y convencional. [Tesis de grado para obtener el titulo de Ingeniero Agronomo].Cuenca: Universidad de Cuenca; 2016.spa
dc.relation.referencesCarbonetto MB. Diversidad de las comunidades microbianas de los suelos pampeanos . [Tesis para optar al titulo de Doctor de la Universidad de Buenos Aires en Ciencias Biologicas]. Buenos Aires: Universidad de Buenos Aires; 2014.spa
dc.relation.referencesTamay de Dios L, Ibarra C, Velasquillo C. Fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y de la PCR en tiempo real. Investig en Discapac [Internet]. 2013;2(2):70-78 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://dl.acm.org/citation.cfm?id=1854369spa
dc.relation.referencesGuzman Arias LC, Moreno Muñoz DA. MEJORAMIENTO DEL CEPARIO DE LA UNIVERSIDAD COLEGIO MAYOR DE CUNDINAMARCA MEDIANTE LA CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE LA COLECCIÓN DE CEPAS GRAM NEGATIVAS. [Tesis de grado]. Bogota: Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca; 2018.spa
dc.relation.referencesLivicura Yunga MA, Pañi Arevalo MP. Metagenómica de las comunidades microbianas en suelos hortoflorícolas bajo sistemas de manejo orgánico y convencional. [Tesis para obtener el titulo de Ingeniera Agronoma]. Cuencua: Universidad de Cuenca; 2017.spa
dc.relation.referencesMarilín García Pérez H Electroforesis en geles de poliacrilamida : fundamentos , actualidad e importancia. Univ Diag [Internet]. 2000;1(2):31-41 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://bvs.sld.cu/revistas/uni/vol1_2_00/uni07200.htmspa
dc.relation.referencesCadena Zamudio JD, Martínez Peña MD, Guzmán Rodríguez LF, Arteaga Garibay RI. Aplicación de secuenciación masiva para el estudio y exploración de diversidad microbiana y su aprovechamiento biotecnólogico. agroproductividad [Internet]. 2016;9(2):70-83 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/298352046_APLICACION_DE_ SECUENCIACION_MASIVA_PARA_EL_ESTUDIO_Y_EXPLORACION_ DE_DIVERSIDAD_MICROBIANA_Y_SU_APROVECHAMIENTO_BIOTE CNOLOGICOspa
dc.relation.referencesGaravito A, González Muñoz A, Mosquera Rendón J, Alvarez Yela AC, López Álvarez D, Cristancho Ardila MA. Biodiversidad 109 latinoamericana y sus perspectivas de estudio con tecnologías „ómicas‟ Mex J Biotechnol [Internet]. 2017;2(2):98-129 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/323128845_Biodiversidad_latin oamericana_y_sus_perspectivas_de_estudio_con_tecnologias_‟omicas‟spa
dc.relation.referencesBernabé Salomón LA. IDENTIFICACIÓN MOLECULAR DE BACTERIAS CULTIVADAS Y NO CULTIVADAS ASOCIADAS A LA RIZÓSFERA DE Opuntia ficus-indica (L.) mill. (CACTACEAE) EN ECOSISTEMAS ÁRIDOS. [Tesis de Maestro en ciencias]. Tumbes: Universidad Nacional de Tumbes; 2016.spa
dc.relation.referencesGarrigues F. NGS: Secuenciación de Segunda Generación. [Consultado 13 Ene 2019].spa
dc.relation.referencesIlumina. Sistema MiSeq [Internet]. 2016. Disponible en: https://www.illumina.com/content/dam/illumina- marketing/documents/products/datasheets/miseq-data-sheet-770-2011- 001-translations/miseq-specification-sheet-770-2011-001-esp.pdfspa
dc.relation.referencesRavi RK, Walton K, Khosroheidari M. Miseq: A next generation sequencing platform for genomic analysis. En: Methods in Molecular Biology [Internet]. 2018. p. 223-32. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29423801spa
dc.relation.referencesValenzuela González F, Casillas Hernández R, Villalpando E, Vargas Albores F. The 16S rRNA gene in the study of marine microbial communities. Ciencias Mar [Internet]. 2015;41(4):297-313 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.7773/cm.v41i4.2492spa
dc.relation.referencesEZ BioCloud. 16S rRNA and 16S rRNA Gene [Internet]. 2019 [citado 25 de marzo de 2019]. Disponible en: https://help.ezbiocloud.net/16s-rrna-and-16s-rrna-gene/spa
dc.relation.referencesPace NR, Stahl DA, Lane DJ, Olsen GJ. The Analysis of Natural Microbial Populations by Ribosomal RNA Sequences. En: Marshall K., editor. Advances in Microbial Ecology. 1.a ed. New York: Springer US; 1986. p. 550.spa
dc.relation.referencesHogeweg P. The roots of bioinformatics in theoretical biology. PLoS Comput Biol [Internet]. 2011;7(3):1-5 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://journals.plos.org/ploscompbiol/article?id=10.1371/journal.pcbi.100 2021spa
dc.relation.referencesStrasser BJ. Collecting, Comparing, and Computing Sequences: The Making of Margaret O Dayhoff‟s Atlas of Protein Sequence and Structure, 1954-1965. J Hist Biol [Internet]. 2010;43:623-660 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20665074spa
dc.relation.referencesGálvez EC. BlasStorP HERRAMIENTA NCBI-BLAST A NIVEL LOCAL [Internet]. España; 2010. Disponible en: https://dspace.unia.es/bitstream/handle/10334/401/0102_Chicano.pdf?se quence=1spa
dc.relation.referencesCollado AAC. Análisis y caracterización de trabajos BLAST para la planificación eficiente en entornos Grid y Supercomputación. UNIVERSIDAD POLITÉCNICA DE VALENCIA; 2010.spa
dc.relation.referencesKuczynski J, Stombaugh J, Anton Walters W, Gonzales A, Caporaso G, Knight R. Using QIIME to Analyze 16S rRNA Gene 110 Sequences from Microbial Communities. Genet Mol Biol [Internet]. 2011;36(1):189-194 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://currentprotocols.onlinelibrary.wiley.com/doi/full/10.1002/04712509 53.bi1007s36spa
dc.relation.referencesQuantitative Insights Into Microbial Ecology. QIIME Overview Tutorial [Internet]. [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://qiime.org/1.5.0/tutorials/tutorial.htmlspa
dc.relation.referencesCallahan BJ, McMurdie PJ, Rosen MJ, Han AW, Johnson AJA, Holmes SP. DADA2: High resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods [Internet]. 2013;13(7):581-583 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4927377/spa
dc.relation.referencesCallahan B, McMurdie J, Holmes S. Introduction to dada2 [Internet]. [Consultado 13 Ene 2019]]. 2019. Disponible en: https://bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/dada2/inst/doc/d ada2-intro.htmlspa
dc.relation.referencesGobernación de Córdoba. GEOGRAFÍA DE CÓRDOBA [Internet]. [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://www.cordoba.gov.co/cordoba/geografia.htmlspa
dc.relation.referencesUNIVERSIDAD DE BOGOTÁ JORGE TADEO LOZANO. MUESTREO PARA EL ANÁLISIS DE FERTILIDAD DE SUELOS. 2011.spa
dc.relation.referencesKlindworth A, Pruesse E, Schweer T, Peplies J, Quast C, Horn M, et al. Evaluation of general 16S ribosomal RNA gene PCR primers for classical and next-generation sequencing-based diversity studies. Nucleic Acids Res [Internet]. 2013;41(1):e1. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22933715%0Ahttp://www.pubmedce ntral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=PMC3592464spa
dc.relation.referencesHernandez Leon R, Velazquez Sepulveda I, Orozco Mosquera M, Santoyo G. Metagenómica de suelos: grandes desafíos y nuevas oportunidades biotecnológicas. Rev Int BOTÁNICA Exp [Internet]. 2010;(79):133-139 [Consultado 13 Ene 2019]. Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1851- 56572010000200004spa
dc.relation.referencesKielak AM, Barreto CC, Kowalchuk GA, van Veen JA, Kuramae EE. The ecology of Acidobacteria: Moving beyond genes and genomes. Front Microbiol [Internet]. 2016;7(MAY):1-16 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4885859/pdf/fmicb-07- 00744.pdfspa
dc.relation.referencesRampelotto PH, de Siqueira Ferreira A, Barboza ADM, Roesch LFW. Changes in Diversity, Abundance, and Structure of Soil Bacterial Communities in Brazilian Savanna Under Different Land Use Systems. Microb Ecol. 2013;66(3):593-607.spa
dc.relation.referencesVentura M, Canchaya C, Tauch A, Chandra G, Fitzgerald GF, Chater KF, et al. Genomics of Actinobacteria: Tracing the Evolutionary History of an Ancient Phylum. Microbiol Mol Biol Rev [Internet]. 2007;71(3):495-548 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2168647/pdf/0005-07.pdfspa
dc.relation.referencesBarka EA, Vatsa P, Sanchez L, Gaveau-Vaillant N, Jacquard C, Klenk H-P, et al. Taxonomy, Physiology, and Natural Products of. Am Soc 111 Microbiol [Internet]. 2016;80(1):1-43 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://mmbr.asm.org/content/mmbr/80/1/1.full.pdfspa
dc.relation.referencesOrtiz-Reyes A, Giraldo-Jaramillo TM, Moreno-Herrera CX. Análisis molecular de las bacterias asociadas a los depósitos de desechos de Atta cephalotes (Hymenoptera: Formicidae). Rev Colomb Entomol [Internet]. 2016;42(2):162-170 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/rcen/v42n2/v42n2a09.pdfspa
dc.relation.referencesThomas F, Hehemann JH, Rebuffet E, Czjzek M, Michel G. Environmental and gut Bacteroidetes: The food connection. Front Microbiol [Internet]. 2011;2(MAY):1-16 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3129010/pdf/fmicb-02- 00093.pdfspa
dc.relation.referencesFierer N, Leff JW, Adams BJ, Nielsen UN, Bates ST, Lauber CL, et al. Cross-biome metagenomic analyses of soil microbial communities and their functional attributes. Proc Natl Acad Sci. 2012;109(52):21390-5.spa
dc.relation.referencesLauber CL, Hamady M, Knight R, Fierer N. Pyrosequencing-based assessment of soil pH as a predictor of soil bacterial community structure at the continental scale. Vol. 75, Applied and Environmental Microbiology. 2009. p. 5111-5120 [Consultado 5 Abr 2019].spa
dc.relation.referencesLancaster SH, Hollister EB, Senseman SA, Gentry TJ. Effects of repeated glyphosate applications on soil microbial community composition and the mineralization of glyphosate. Pest Manag Sci [Internet]. 2010;66(1):59-64 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19697445spa
dc.relation.referencesHanada S. The Phylum Chloroflexi, the Family Chloroflexaceae, and the Related Phototrophic Families Oscillochloridaceae and Roseiflexaceae. En: Soil Microbiology, Ecology and Biochemistry [Internet]. Japon; 2012. p. 119-44. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/287126887_The_Phylum_Chlor oflexi_the_Family_Chloroflexaceae_and_the_Related_Phototrophic_Fami lies_Oscillochloridaceae_and_Roseiflexaceaespa
dc.relation.referencesPitombo LM, do Carmo JB, de Hollander M, Rossetto R, López M V., Cantarella H, et al. Exploring soil microbial 16S rRNA sequence data to increase carbon yield and nitrogen efficiency of a bioenergy crop. En: GCB Bioenergy [Internet]. 2016. p. 867-879 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://somiecoc.unal.edu.co/fileadmin/content/eventos/somiecoc/KURAM AE_E_EXPLORING_SOIL_MICROBIAL_16S_RRNA_SEQUENCE_DAT A_TO_INCREASES_CARBON_YIELD.pdfspa
dc.relation.referencesNormand P, Benson DR, Berry AM, Tisa LS. The Family Frankiaceae. En: The Prokaryotes. 2012. p. 119-44.spa
dc.relation.referencesSpinler JK. Corynebacteriaceae. Encycl Metagenomics [Internet]. 2015;112-119 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1002/9781118960608.fbm00011spa
dc.relation.referencesDastager SG, Krishnamurthi S, Rameshkumar N, Dharne M. The Family Micrococcaceae. 27.a ed. The Prokaryotes. India; 2012. 119-144 p.spa
dc.relation.referencesManteca A, Sanchez J. Streptomyces development in colonies and soils. Appl Environ Microbiol [Internet]. 2009;75(9):2920-2924 112 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://aem.asm.org/content/aem/75/9/2920.full.pdfspa
dc.relation.referencesSantric L, Radivojevic L, Gajic-Umiljendic J, Saric-Krsmanovic M, Djurovic-Pejcev R. Effects of herbicides on growth and number of actinomycetes in soil and in vitro. Pestic i fitomedicina [Internet]. 2017;31(3-4):121-128 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://scindeks-clanci.ceon.rs/data/pdf/1820-3949/2016/1820- 39491604121S.pdfspa
dc.relation.referencesMateos L, Letek M, Villadangos A, Fiuza M, Ordoñez E, Gil J. Corynebacterium. Molecular Detection of Human Bacterial Pathogens. 2011. 59-73 p.spa
dc.relation.referencesBerry AM, Barabote RD, Normand P. The Family Acidothermaceae. En: The Prokaryotes. Francia; 2012. p. 119-44.spa
dc.relation.referencesPlassart P, Prévost-Bouré NC, Uroz S, Dequiedt S, Stone D, Creamer R, et al. Soil parameters, land use, and geographical distance drive soil bacterial communities along a European transect. Sci Rep. 2019;9(1):1-17 [Consultado 5 Abr 2019].spa
dc.relation.referencesBusse H-J, Wieser M Pseudarthrobacter Bergey‟s Man Syst Archaea Bact. 2018;1-13.spa
dc.relation.referencesKim SJ, Park JH, Lim JM, Ahn JH, Anandham R, Weon HY, et al. Parafilimonas terrae gen. nov., sp. nov., isolated from greenhouse soil. Int J Syst Evol Microbiol. 2014;64(May):3040-3045 [Consultado 5 Abr 2019].spa
dc.relation.referencesHanada S, Takaichi S, Matsuura K, Kazunori N. Roseiflexus castenholzii gen. nov., sp. nov., a thermophilic, filamentous, photosynthetic bacterium that lacks chlorosomes. Int J Syst Evol Microbiol [Internet]. 2002;52:187-193 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/11524200_Roseiflexus_castenh olzii_gen_nov_sp_nov_a_thermophilic_filamentous_photosynthetic_bacte rium_that_lacks_chlorosomesspa
dc.relation.referencesKoch IH, Gich F, Dunfield PF, Overmann J. Edaphobacter modestus gen. nov., sp. nov., and Edaphobacter aggregans sp. nov., acidobacteria isolated from alpine and forest soils. Int J Syst Evol Microbiol [Internet]. 2008;58(5):1114-1122 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.microbiologyresearch.org/docserver/fulltext/ijsem/58/5/1114.p df?expires=1557205164&id=id&accname=guest&checksum=BE32D8D1 DCBE00698A261EA9BCBC55B2spa
dc.relation.referencesCorrales Ramírez, MSc LC, Sánchez Leal, MSc LC, Arévalo Galvez ZY, Moreno Burbano VE. Bacillus: género bacteriano que demuestra ser un importante solubilizador de fosfato. Nova [Internet]. 2017;12(22):165 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://hemeroteca.unad.edu.co/entrenamiento/index.php/nova/article/view /1041/1037spa
dc.relation.referencesWolmarans K, Swart WJ. Influence of glyphosate , other herbicides and genetically modified herbicide-resistant crops on soil microbiota : a review South African J Plant Soil [Internet] 2014;31(4):177-186 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.tandfonline.com/doi/pdf/10.1080/02571862.2014.960485?nee dAccess=truespa
dc.relation.referencesDeBruyn JM, Nixon LT, Fawaz MN, Johnson AM, Radosevich M. 113 Global Biogeography and Quantitative Seasonal Dynamics of Gemmatimonadetes in Soil. Appl Environ Microbiol [Internet]. 2011;77(17):6295-6300 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://aem.asm.org/content/aem/77/17/6295.full.pdfspa
dc.relation.referencesLefevre CT, Frankel RB, Abreu F, Lins U, Bazylinski DA. Culture- independent characterization of a novel, uncultivated magnetotactic member of the Nitrospirae phylum. Environ Microbiol [Internet]. 2011;13(2):538-549 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20977572spa
dc.relation.referencesDaims H, Lebedeva E V., Pjevac P, Han P, Herbold C, Albertsen M, et al. Complete nitrification by Nitrospira bacteria. Nature [Internet]. 2015;528(7583):504-509 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1038/nature16461spa
dc.relation.referencesHan S, Luo X, Liao H, Nie H, Chen W, Huang Q. Nitrospira are more sensitive than Nitrobacter to land management in acid, fertilized soils of a rapeseed-rice rotation field trial. Sci Total Environ [Internet]. 2017;599-600:135-144 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.scitotenv.2017.04.086spa
dc.relation.referencesBuckley DH, Schmidt TM. Diversity and dynamics of microbial communities in soils from agro-ecosystems. Environ Microbiol [Internet]. 2003;5(6):441-452 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://sci- hub.tw/https://doi.org/10.1046/j.1462-2920.2003.00404.xspa
dc.relation.referencesFrancis CA, Beman JM, Kuypers MMM. New processes and players in the nitrogen cycle: The microbial ecology of anaerobic and archaeal ammonia oxidation. ISME J [Internet]. 2007;1(1):19-27 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://sci- hub.tw/10.1038/ismej.2007.8spa
dc.relation.referencesOwa FW. International Letters of Natural Sciences ILNS [Internet]. Vol. 74, International Letters of Natural Sciences. 2019. Disponible en: http://yadda.icm.edu.pl/yadda/element/bwmeta1.element.agro-0c6457fb- fa78-4aa1-9eca- 5f4483681a90;jsessionid=A5FD306CF6A612D71474B94727119939spa
dc.relation.referencesCarbonetto B, Rascovan N, Álvarez R, Mentaberry A, Vázquez MP. Structure, composition and metagenomic profile of soil microbiomes associated to agricultural land use and tillage systems in Argentine Pampas. Microbiomes Agric Soils. 2014;9(6):[Consultado 5 Abr 2019].spa
dc.relation.referencesNavarrete AA, Soares T, Rossetto R, van Veen JA, Tsai SM, Kuramae EE. Verrucomicrobial community structure and abundance as indicators for changes in chemical factors linked to soil fertility. Antonie van Leeuwenhoek, Int J Gen Mol Microbiol [Internet]. 2015;108(3):741- 752 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4525199/pdf/10482_2015_ Article_530.pdfspa
dc.relation.referencesSpain AM, Krumholz LR, Elshahed MS. Abundance, composition, diversity and novelty of soil Proteobacteria. ISME J [Internet]. 2009;3(8):992-1000. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1038/ismej.2009.43spa
dc.relation.referencesKelly ᰔ, Williams P, Gillespie JJ, Sobral BWS, Nordberg EK, Snyder EE, et al. Phylogeny of Gammaproteobacteria. J Bacteriol [Internet]. 2010;192(9):2305-2314 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible 114 en: http://jb.asm.org/content/192/9/2305.full.pdfspa
dc.relation.referencesKim HM, Jung JY, Yergeau E, Hwang CY, Hinzman L, Nam S, et al. Bacterial community structure and soil properties of a subarctic tundra soil in Council, Alaska. FEMS Microbiol Ecol [Internet]. 2014;89(2):465-475 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4143960/pdf/fem0089- 0465.pdfspa
dc.relation.referencesCho SJ, Kim MH, Lee YO. Effect of pH on soil bacterial diversity. J Ecol Environ [Internet]. 2016;40(1):1-9. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1186/s41610-016-0004-1spa
dc.relation.referencesRen C, Sun P, Kang D, Zhao F, Feng Y, Ren G, et al. Responsiveness of soil nitrogen fractions and bacterial communities to afforestation in the Loess Hilly Region (LHR) of China. Sci Rep [Internet]. 2016;6:1-11 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1038/srep28469spa
dc.relation.referencesShinabarger DL, Braymer HD. Glyphosate catabolism by Pseudomonas sp. strain PG2982. J Bacteriol [Internet]. 1986;168(2):702- 707 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://jb.asm.org/content/jb/168/2/702.full.pdfspa
dc.relation.referencesShinabarger DL, Schmitt EK, Braymer HD, Larson AD. Phosphonate utilization by the glyphosate-degrading Pseudomonas sp. strain PG2982. Appl Environ Microbiol [Internet]. 1984;48(5):1049-1050 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://aem.asm.org/content/aem/48/5/1049.full.pdfspa
dc.relation.referencesGimsing AL, Borggaard OK, Jacobsen OS, Aamand J, Sørensen J. Chemical and microbiological soil characteristics controlling glyphosate mineralisation in Danish surface soils. Appl Soil Ecol [Internet]. 2004;27(3):233-242 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0929139304000794spa
dc.relation.referencesVoronina OL, Kunda MS, Ryzhova NN, Aksenova EI, Semenov AN, Lasareva A V., et al. The Variability of the Order Burkholderiales Representatives in the Healthcare Units. Biomed Res Int [Internet]. 2015;2015:1-9 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4465658/pdf/BMRI2015- 680210.pdfspa
dc.relation.referencesKuklinsky-Sobral J, Araújo WL, Mendes R, Pizzirani-Kleiner AA, Azevedo JL. Isolation and characterization of endophytic bacteria from soybean (Glycine max) grown in soil treated with glyphosate herbicide. Plant Soil [Internet]. 2005;273(1-2):91-99 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://sci-hub.tw/https://doi.org/10.1007/s11104-004- 6894-1spa
dc.relation.referencesCuadrado B, Rubio G, Santos W. Caracterización de cepas de Rhizobium y Bradyrhizobium (con habilidad de nodulación) seleccionados de los cultivos de fríjol caupi (Vigna unguiculata) como potenciales bioinóculos. Rev Colomb Cienc Quím Farm [Internet]. 2009;38(1):78-104 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/rccqf/v38n1/v38n1a06.pdfspa
dc.relation.referencesZablotowicz RM, Reddy KN. Impact of Glyphosate on the Symbiosis with Glyphosate-Resistant Transgenic Soybean. J Environ Qual [Internet]. 2010;33(3):825 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: 115 https://sci-hub.tw/10.2134/jeq2004.0825spa
dc.relation.referencesDos Santos JB, Ferreira EA, Kasuya MCM, Da Silva AA, Procópio SDO. Tolerance of Bradyrhizobium strains to glyphosate formulations. Crop Prot [Internet]. 2005;24(6):543-547 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0261219404002789spa
dc.relation.referencesFalagán C, Johnson DB. Acidibacter ferrireducens gen. nov., sp. nov.: an acidophilic ferric iron-reducing gammaproteobacterium. Extremophiles [Internet]. 2014;18(6):1067-1073 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://link.springer.com/article/10.1007%2Fs00792-014- 0684-3spa
dc.relation.referencesKämpfer P, Young CC, Arun AB, Shen FT, Jäckel U, Rosselló- Mora R, et al. Pseudolabrys taiwanensis gen. nov., sp. nov., an alphaproteobacterium isolated from soil. Int J Syst Evol Microbiol [Internet]. 2006;56(10):2469-2472 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/6781675_Pseudolabrys_taiwan ensis_gen_nov_sp_nov_an_alphaproteobacterium_isolated_from_soilspa
dc.relation.referencesHan JI, Choi HK, Lee SW, Orwin PM, Kim J, LaRoe SL, et al. Complete genome sequence of the metabolically versatile plant growth- promoting endophyte Variovorax paradoxus S110. J Bacteriol [Internet]. 2011;193(5):1183-1190 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3067606/pdf/0925-10.pdfspa
dc.relation.referencesSun S-L, Yang W-L, Fang W-W, Zhao Y-X, Guo L, Daia Y-J. The Plant Growth-Promoting Rhizobacterium Variovorax boronicumulans CGMCC 4969 Regulates the Level of Indole-3- Acetic Acid Synthesized from Indole-3-Acetonitrile. 2018;84(16):1-14 [Consultado 5 Abr 2019]. Disponible en: https://aem.asm.org/content/aem/84/16/e00298-18.full.pdfspa
dc.relation.referencesSiavosh Sadeghian Khalajabadi. La acidez del suelo, una limitante común para la producción de café. Av Técnicos Cenicafé [Internet]. 2016;1-12 [Consultado 4 Jun 2019]. Disponible en: https://www.cenicafe.org/es/publications/AVT0466.pdfspa
dc.relation.referencesKhalajabadi SS. Efecto de los cambios en las relaciones de calcio, magnesio y potasio intercambiables en suelos de la zona cafetera colombiana sobre la nutrición de café (Coffea arabica L.) en la etapa de almácigo. Bogota; Universidad Nacional de Colombia.[Tesis de grado para optar el titulo de Doctor en Ciencias Agrarias ]; 2012.spa
dc.relation.referencesMolina E. ANÁLISIS DE SUELOS Y SU INTERPRETACIÓN [Internet]. Costa Rica; 2015. Disponible en: www.aminogrowinternacional.comspa
dc.relation.referencesMartínez A, Reyes I, Reyes N. Citotoxicidad del glifosato en células mononucleares de sangre periférica humana. Biomedica [Internet]. 2007;27:594-604 [Consultado 31 May 2019 ]. Disponible en: https://revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/176/167spa
dc.relation.referencesAranda G, Valenzuela A, Garcia D, Almeira J. Efectos del glifosato sobre la salud humana. El Centauro [Internet]. 2015;(11):71-86 [Consultado 31 May 2019 ]. Disponible en: https://revistas.unilibre.edu.co/index.php/centauro/article/view/2473/1908spa
dc.relation.referencesRico D, Scoppetta O, Alzate JP, Ferro AG. Verdades científicas sobre glifosato y salud pública [Internet]. Vol. 1. 2016. Disponible en: 116 http://cdn.ideaspaz.org/media/website/document/580a336fc9e1c.pdfspa
dc.relation.referencesCortina C, Fonnegra F, Pineda M, Muñoz P, Fonnegra R, Díaz Z, et al. Effects of glyphosate intoxication in farming population: topic review. Rev CES Salud Pública [Internet]. 2017;8(1):121-133 [Consultado 31 May 2019 ]. Disponible en: http://revistas.ces.edu.co/index.php/ces_salud_publica/article/viewFile/44 27/2824spa
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