dc.contributor.advisor | Lancheros, Ana Graciela | |
dc.contributor.advisor | Rodríguez, Carolina Jaime | |
dc.contributor.author | Pérez Rodríguez, Diana Milena | |
dc.contributor.author | Catama González, Jenssy Daniela | |
dc.date.accessioned | 2022-03-10T13:43:53Z | |
dc.date.available | 2022-03-10T13:43:53Z | |
dc.date.issued | 2018-05 | |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4800 | |
dc.description.abstract | En Colombia se ha reconocido el uso inadecuado de los suelos moderadamente fértiles
localizados en zonas urbanas, donde la técnica agrícola es la base principal de explotación y
sustento diario; a su vez el uso indiscriminado de pesticidas, herbicida y fertilizantes han
contribuido a la erosión y daño progresivo del suelo. Es allí donde nace la necesidad de
implementar herramientas para la conservación y preservación de ecosistemas, método que
actualmente se conoce como restauración ecológica.
El propósito del presente proyecto es la evaluación de rizobacterias solubilizadoras de
fosfato con capacidad PGPR (Plant Growth-Promoting Rhizobacteria) aisladas del suelo de la
Universidad Antonio Nariño sede Usme (Corredor Chingaza-Sumapaz) y de Bosque Alto
Andino, en medios de cultivo selectivos identificados como SMRS-1, PSM y Pikovskaya con el
objetivo de usarlas en el crecimiento de las plantas Tibar (Escallonia paniculata) y Raque
(Vallea stipularis) usadas frecuentemente para restauración ecológica.
Se lograron aislar 44 cepas, las cuales se clasificaron mediante pruebas cualitativas
(método fosfatasas) y cuantitativas (producción AIA (Ácido indol acético)) para identificar su
actividad PGPR, se usaron en la preparación del inóculo el cual posteriormente se utilizó sobre
las plantas Tibar (Escallonia paniculata) y Raque (Vallea stipularis) bajo condición de vivero
reconociendo la capacidad de estimular el crecimiento y desarrollo de la población vegetal,
evaluado a partir del uso de variables (altura, número hojas y grosor tallo) analizadas por medio
del método estadístico de varianza simple ANOVA. Los microorganismos fueron identificados
como E. cloacae, P. agglomerans y S. marcescens. | spa |
dc.description.tableofcontents | RESUMEN 13
INTRODUCCIÓN 14
1. OBJETIVOS 15
1.1 Objetivo general 15
1.2 Objetivos específicos 15
2. ANTECEDENTES 16
3. MARCO TEÓRICO 23
3.1. Restauración ecológica 23
3.2. Bosque Alto Andino 24
3.3 Problemática de los Bosques Altos Andinos 26
3.4 Rizobacterias 27
3.5. El fósforo como nutriente y su importancia 29
3.6. Presentación del fósforo en el suelo 30
3.7. Ciclo de Fósforo 32
3.8. Solubilización de fosfato una nueva alternativa biológica 33
3.9 Enzimas Fosfatasas 37
3.10 Enzimas Fitasas 37
3.11 Banco de cepas 38
3.12 Screening microbiano 39
3.13 Viabilidad y pureza 40
3.14 Evaluación y técnicas de promotores del crecimiento vegetal (PGPR) 40
3.15. Actividad Solubilizadora de Fósforo 41
3.16. Técnicas de Bioensayo en vivero 43
3.17 Árboles forestales uso en ensayos de restauración 43
3.17.1 Descripción vegetal 43
3.17.2 Vallea stipularis 44
3.17.3 Escallonia paniculata 46
4.1. Tipo de investigación y enfoque 48
4.1.1. Enfoque 48
4.2. Universo, población y muestra 48
4.2.1. Universo 48
4.2.2. Población 48
4.2.3. Muestra 48
4.3. Hipótesis, variables, indicadores 48
4.3.1. Hipótesis de investigación 48
4.3.2. Variables 49
4.3.3. Indicadores 49
4.4 Técnicas y procedimientos 49
4.4.1 Muestreo del suelo 49
4.4.2.1 Aislamiento de bacterias solubilizadoras de fosfato 51
4.4.2.2 Screening de selección 52
4.4.2.3 Conservación de las cepas 52
4.4.2.3 Evaluación de Viabilidad y Pureza 52
4.4.2.4 Evaluación de la actividad solubilizadora de fosfato 53
4.4.2.5 Ensayo de AIA (Ácido Indol Acético) 54
4.4.2.6 Pruebas de identificación de PGPR 54
4.4.2.7 Realización de preinóculos y curva de crecimiento 55
4.4.2.8 Fase II. Evaluación de tratamientos inoculados a escala de vivero 55
4.4.2.9. Bioensayo a escala de vivero 56
4.4.2.10 Diseño del experimento en vivero 57
4.4.2.11 Análisis de datos 58
5. RESULTADOS 59
5.1 Fase I. Aislamiento y caracterización de rizobacterias solubilizadoras de fosfato 59
5.1.1 Codificación y evaluación de microorganismos solubilizadores de fosfato 66
5.1.2 Evaluación de la actividad solubilizadora de fosfato 67
5.1.3 Ensayo de AIA (Ácido Indol Acético ) 69
5.1.4 Pruebas de identificación de microorganismos Plant growth-promoting rhizobacteria
(PGPR ) 71
5.1.5 Fase II. Evaluación de tratamientos inoculados a escala de vivero inóculos y curva 73
5.1.6 Bioensayo en vivero 77
5.1.8 Análisis de datos estadísticos de varianza 82
5.1.8.1 Altura Tibar (Escallonia paniculata) 82
5.1.8.2 Número de hojas planta Tibar (Escallonia paniculata) 84
5.1.8.3 Grosor del tallo planta Tibar (Escallonia paniculata) 86
5.1.8.4 Altura planta Raque (Vallea stipularis) 88
5.1.8.5 Número de hojas planta Raque (Vallea stipularis) 90
5.1.8.6 Grosor de tallo planta Raque (Vallea stipularis) 92
6. DISCUSIÓN 94
7. CONCLUSIONES 99
8. RECOMENDACIONES 100
9. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 101
ANEXOS 111 | spa |
dc.format.extent | 111p. | spa |
dc.format.mimetype | application/pdf | spa |
dc.language.iso | spa | spa |
dc.publisher | Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca | spa |
dc.rights | Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2018 | spa |
dc.rights.uri | https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ | spa |
dc.title | Evaluación de Rizobacterias solubilizadoras de fosfato aisladas de Bosque Alto Andino para uso en restauración ecológica del corredor Chingaza-Sumapaz | spa |
dc.type | Trabajo de grado - Pregrado | spa |
dc.description.degreelevel | Pregrado | spa |
dc.description.degreename | Bacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico | spa |
dc.identifier.barcode | 58442 | |
dc.publisher.faculty | Facultad de Ciencias de la Salud | spa |
dc.publisher.place | Bogotá D.C | spa |
dc.publisher.program | Bacteriología y Laboratorio Clínico | spa |
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